不同基质对盆栽薰衣草生理指标的影响
1 材料和方法
1.1 材料
本试验所选用的品种为狭叶薰衣草和羽叶薰衣草两种。均选取每盆中长势最旺盛、无病虫害侵害的部位叶片来进行试验。
1.2 光合特性指标测定方法
试验使用采用美国 Li-COR 公司生产的 Li-6400 在连续的晴天上午 9:00 -11:00 中进行，在完全自然条件下采用 Li-6400-02B 红蓝光源进行测定，开放式气路，气体流速控制 为 500μmol·s-1 ， 叶 室 控 制 温 度 为 大 气 温 度 （ 28 ℃ -32 ℃ ）， 光 合 有 效 辐 射PAR=1200μmol·m-2·s-1，选取试验处理的薰衣草每株苗木新梢以下的第 3 片完全展开的功能叶为光合特性测样对象，每个叶片重复测 3 次，每个处理测量 3-5 株，取平均值。测定指标包括净光合速率(Pn，μmol CO2·m2·s-1)、蒸腾速率(Tr，mmol H2O·m-2·s-1)、气孔导度(Gs，mol CO2·m-2·s-1)和细胞间隙 CO2 浓度(Ci，μmol·mol-1)，并计算瞬时水分利用率（WUE，mmol·mol-1），计算公式为：WUE=Pn/Tr 。
由于薰衣草叶片形状不规则，在测量中需将测量后的叶片单独剪下，利用Auto CAD2011 计算叶面积，在重新导入叶面积数据计算。
1.3 叶绿素含量测定方法
采用 SPAD502 叶绿素仪测定薰衣草叶片叶绿素含量，每株植物取 10 个叶片测量，每个处理重复测 3 株。
1.4 可溶性糖含量测定方法
使用苏州科铭生物技术有限公司提供的植物可溶性糖含量试剂盒，用微量法测定薰衣草叶片可溶性糖含量，使用仪器为离心机、可见分光光度计、水浴锅。
可溶性糖的提取：称取 0.1g 薰衣草叶片样品，加入 1m L 蒸馏水研磨成匀浆，倒入有盖离心管中，95℃水浴 10min（盖紧，以防止水分散失），冷却后，8000g，25℃离心10min，取上清液于 10ml 试管中，用蒸馏水定容至 10m L，摇匀备用。
样品的测定：
（1）工作液的配制：在试剂一中加入 2.5m L 试剂二，充分溶解后使用。
（2）加样表（在 EP 管中反应）
混匀，置 95 度水浴中 10min，冷却至室温后，取 200μL 转移至微量石英比色皿中，与 620nm 处，分别读取空白值和测定管吸光值，△A=A 测定管-A 空白管，W：样本鲜重。
1.5 可溶性蛋白含量测定方法
使用湖南天根生化科技有限公司提供的 Bradford 蛋白质定量试剂盒，用微量法测定薰衣草叶片可溶性糖含量，使用仪器为：离心机、酶标仪、制冰机。
可溶性蛋白的提取：称取 0.1g 薰衣草叶片样品，加入 5m LPBS 缓冲液冰浴研磨提取，8000g，4℃离心 10min，其上清液即为可溶性蛋白提取液。
样品的测定：
（1）将 0、1、2、3、4、5、6μL 牛血清蛋白标准溶液（1mg/ml）分别加入到酶标板中，加 PBS 补足到 15μL。
（2）将 4μL 的样品加入到酶标板，并用 PBS 补足到 15μL。
（3）向各试管中加入 285μL 考马斯蓝染液，混匀，室温放置 5min。
（4）用酶标仪测定 595nm 处的样品浓度。
