1 材料与方法
1.1 试验材料与处理
Tra T2A 蛋白质、百合灰霉菌 Botrytis cinerea 分离保存于实验室 4 ℃冰箱中。45 d 苗龄的百合幼苗和 60 d 鳞片扦插百合幼苗（诱导抗病效果）种植于温室花盆中。
试验仪器有叶绿素荧光成像系统（Imaging-Pam，Walz，Germany）、显微镜（Nikon ECLIPSE E200）和测微尺等。
选取生长一致的、健康百合幼苗 40 株，分为 4 组，每组 10 株，分别进行对照（灭菌水）、接种灰霉菌（简称 IB，喷灭菌水后 48 h 接种 1 × 106个 · m L-1灰霉菌孢子悬浮液）、Tra T2A（Tra T2A 稀释 100 倍喷雾）、Tra T2A + IB（喷 Tra T2A 后 48 h 接种灰霉菌）4 个处理。每处理重复 3 次，共处理幼苗 120 株。
1.2 Tra T2A 诱导处理对百合叶片气孔及合光响应和荧光特性的影响试验
1.2.1 叶片气孔特性
分别于接种灰霉菌前 1 d，接菌后 1、3、5、7、9 d 用灭菌过的剪刀剪取百合植株上、中、下 3个部位的叶片，分别代表幼叶、生长中期及生长早期的叶片，灭菌水冲洗干净，每个处理观察 9 片叶，每个叶片选取 3 个部位（上、中、下）剪取大小 1 mm × 2 mm 的小叶块，在等量的 95%乙醇和冰醋酸混合液中固定 24 h，然后浸泡于饱和水合氯醛水溶液中，待组织透明后取出，制玻片，在 10 × 40 倍显微镜下观察、记录气孔数，测量气孔大小（李映霞，2004）。
1.2.2 叶片光响应
取上述接菌后 3 d 的百合幼苗叶片（每个处理 4 片），在 MAXI Imaging-PAM 的 Light Curve窗口设置光合有效辐射强度梯度分别为 0、9、20、29、40、56、75、102、133、165、204、297、370、455、580、725、922 μmol · m-2 · s-1，相邻光照强度之间间隔 10 s，由此可以得到 PSⅡ相对电子传递速率（ETR）随光强 PAR 增加的变化趋势。
1.2.3 叶片叶绿素荧光参数
取上述接菌后 3 d 的百合幼苗叶片（每个处理 4 片），从 9：00 开始，利用叶绿素荧光成像系统（Imaging-Pam，Walz，Germany）和荧光图像分析软件（Imagingwin，Walz）测定叶绿素荧光诱导动力学参数[室温（25 ± 2）℃，光强 3 000 μmol · m-2 · s-1]。用黑布遮光，叶片经 20 min 以上充分暗适应后，打开弱测量光（不大于 1 μmol · m-2 · s-1）测定初始荧光（F0），此时再打开一次饱和脉冲光（3 000 μmol · m-2 · s-1），测定叶绿素的最大荧光 Fm。然后在光化光下达到稳定后记录其稳态荧光（Fs），给一次饱和脉冲光测定 Fm′。
计算 PSⅡ的最大量子产量[Fv/Fm =（Fm–F0）/Fm，反映植物潜在最大光合能力]、PSⅡ的实际量子产量[ФPSⅡ =（Fm′–Fs）/Fm′，反映植物的实际光合效率]、光化学淬灭系数[qP =（Fm′–Fs）/（Fm′–F0′），由光合作用引起的荧光淬灭]、非光化学淬灭系数[NPQ =（Fm–Fm′）/Fm′，由热耗散引起的荧光淬灭]等荧光参数值（王振宇 等，2006）。
1.3 Tra T2A 诱导处理兰州百合抗灰霉病试验
根据以下分级标准，观察记录 Tra T2A + IB 和 IB 处理 5 d 和 7 d 的百合幼苗灰霉病发病情况，并计算病情指数及诱导抗病效果。
病害分级标准：0 级，叶片未发现病斑；1 级，病斑的面积占总叶片面积的 1%以下；2 级，病斑的面积占总叶片面积的 2% ~ 5%；3 级，病斑的面积占总叶片面积的 6% ~ 20%；4 级，病斑的面积占总叶片面积的 21% ~ 40%；5 级，病斑的面积占总叶片面积的 40%以上（梁巧兰 等，
2016）。
病情指数 = [?（各级病叶数 × 各级代表值）/（调查总叶数 × 最高级代表值）] × 100。
诱导抗病效果（%）=（对照病情指数–处理病情指数）/对照病情指数 × 100。
1.4 数据统计与分析
试验数据采用 DPS v7.05 软件进行统计分析，并通过邓肯氏新复极差法进行差异显著性分析。
