3.1不同消毒方式对姬玉露多肉花葶消毒效果的影响
由表4可知，4个消毒时间中，1号污染率最高为57.81%，死亡率最低为0，消毒剂选用0.1%升汞时，数据显示随着消毒时间的增加，花葶的污染率逐渐降低，而死亡率却逐渐升高。由存活率数据可知最佳消毒时间8min，此时污染率为20.36%，死亡率最低为0，存活率最高为79.64%。
3.2不同基本培养基对花葶丛生芽诱导的影响
以姬玉露多肉花葶为外植体，基本培养基选用MS时，花葶接入培养基第10天时，其基部有少量愈伤产生，花蕾基部开始有芽萌动，在接种30天时，丛生芽叶片展开，芽翠绿且健壮。基本培养基为1/2MS时，花葶接入培养基20天时，长出的丛生芽矮小、细弱。由表5数据可知，在附加相同的激素下，四种培养基中MS培养基诱导的丛生芽数量最多为45个，丛生芽生长平均高度也最高为3.45cm。从表5的生长势的数据看，最佳的也为MS培养基。因此四种培养基在对花葶丛生芽诱导的影响效果为：MS>B5>WPM>1/2MS。最适宜的基本培养基为MS培养基。
3.3不同激素及浓度组合对花葶丛生芽诱导的影响
以姬玉露多肉花葶为外植体，在接种约15d左右分化产生丛生芽，其表面有较多绿色的小芽点（见图1）。附加不同种类及浓度的激素，见表6中数据可知，不同浓度6-BA与不同浓度IBA组合即1～14号培养基中，当IBA浓度为0.5mg/L，6-BA浓度为2.0mg/L时，丛生芽诱导率最高为58.82%，丛生芽长势良好。当IBA浓度为1.0mg/L，6-BA浓度为2.0mg/L时，丛生芽诱导率最高为65.75%，丛生芽长势好。当NAA浓度为0.5mg/L，6-BA浓度为2.0mg/L时，丛生芽诱导率最高为60.70%，丛生芽长势良好。当NAA浓度为1.0mg/L，6-BA浓度为2.5mg/L时，丛生芽诱导率最高为68.50%，丛生芽长势好（见图2）。综上所述，根据丛生芽诱导率和丛生芽长势，可知最适宜诱导花葶丛生芽的激素组合为：6-BA2.5mg/L+NAA1.0mg/L。
3.4不同种类及浓度的激素对花葶丛生芽增殖的影响
根据表7数据分析可知，当细胞分裂素选用6-BA时，再分别附加生长素IBA和NAA对比发现，当IBA浓度为0.3mg/L，6-BA浓度为0.5mg/L时，培养过程中发现芽翠绿，矮小，无玻璃化现象，芽平均增殖系数最高为3.45。当NAA浓度为0.3mg/L，6-BA浓度为0.5mg/L时，芽翠绿，健壮，无玻璃化现象，芽平均增殖系数最高为5.25。因此表7显示出，最适宜花葶丛生芽增殖的激素组合为：6-BA0.5mg/L+NAA0.3mg/L。
根据表8数据分析可知，当细胞分裂素选用KT时，再分别附加生长素IBA和NAA对比发现，当IBA浓度为0.3mg/L，KT浓度为1.0mg/L时，培养过程中发现芽黄绿，细弱，无玻璃化现象(见图3)，芽平均增殖系数最高为2.86。当NAA浓度为0.5mg/L，KT浓度为1.0mg/L时，芽翠绿，健壮，无玻璃化现象（见图4），芽平均增殖系数最高为3.95。因此，表8中结果表明，最适宜花葶丛生芽增殖的激素组合为：KT1.0mg/L+NAA0.5mg/L。将表7和表8做对比发现，6-BA与NAA组合优于KT与NAA组合，故最适宜花葶丛生芽增殖的激素组合为：KT1.0mg/L+NAA0.5mg/L。
3.5不同消毒方法对叶片消毒的影响
以成熟叶片为外植体，本试验采用八种消毒方法，从表9中可以看出，消毒效果最好的方法是编号7：5%NaClO2min+0.1%HgCl28min（附加2滴吐温-20），污染率为3.45%，死亡率较低为6.46%，存活率最高为90.09%。其次是编号6的处理：5%NaClO2min+0.1%HgCl26min（附加2滴吐温-20）处理，存活率可达到81.78%。从编号1～编号4看出，仅用一种消毒剂（0.1%HgCl2、5%NaClO）组合的消毒效果均不是最佳消毒方法，叶片接入培养基三天后出现污染现象，随着培养的继续，污染现象会越来越严重。
3.6不同激素及浓度组合对叶片愈伤组织诱导培养的影响
以姬玉露叶片为外植体，本试验设计的所有不同激素及浓度组合都可以诱导出愈伤组织，只是诱导出的愈伤组织的状态，愈伤组织的多少及诱导率等都有不同程度的差异。叶片在培养约15d左右，其切口边缘长出少量白色愈伤组织（见图5）。由表10中可以观察出，编号5，13，22，29愈伤诱导率较高，愈伤组织产生的量也较多，但经过对比这四种培养基的愈伤生长状态有差异，5号的状态最好，愈伤组织状态为疏松的黄绿色愈伤，表面呈颗粒状，无褐化现象（见图6）。
总体观察来看，由添加2,4-D诱导出的愈伤组织是湿润细密的，后期培养不容易分化，因此附加生长素NAA，优于附加生长素2,4-D。KT附加NAA与6-BA附加NAA做比较，即编号1～8与编号9～16的数据做对比，可以看出1～8的最高出愈率为76.76%，9～16的最高出愈率为69.87%，虽然两者的愈伤组织量都很多，但从出愈率看还是6-BA组合优于KT组合。因此由表10可以得出最适宜叶片愈伤组织诱导的激素组合为：6-BA2.0mg/L+NAA0.5mg/L。
3.7不同激素及浓度组合对叶片愈伤组织分化培养的影响
将叶片愈伤组织放在不同浓度6-BA与NAA以及6-BA与IAA组合的培养基上进行培养，由表11可以看出，18种组合均可以诱导叶片愈伤组织分化出不定芽（见图7）。当生长素选用IAA时的分化率最高为45.27%，当生长素选用NAA时的分化率最高为55.48%，因此生长素NAA优于生长素IAA。编号12的激素组合的叶片愈伤组织分化率最高为55.48%，其次是编号11（见图8）的激素组合叶片愈伤组织分化率为50.54%，两者分化出的芽的生长状态做对比时发现，12号培养基虽然愈伤组织分化率高于11号培养基，但是生长出的芽细弱，且有玻璃化现象，不利于后期壮苗生根培养，因此最适宜的分化培养的激素组合为：6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L。
将增殖后的叶片愈伤组织放在不同浓度KT与NAA以及KT与IAA组合的培养基上，由表12可以看出，所有组合均可以诱导分化出不定芽。当生长素选用IAA时的分化率最高为39.55%，当生长素选用NAA时的分化率最高为48.19%，因此生长素NAA优于生长素IAA。编号12的激素组合的愈伤组织分化率最高为48.19%，其次是编号11的激素组合愈伤组织分化率为43.35%，两者分化出的芽的生长状态做对比时发现，11号的激素组合产生的芽更健壮(见图9)，但是12号生长出的芽细弱（见图10)，不利于后期壮苗生根培养，因此最适宜的分化培养的激素组合为：KT1.0mg/L+NAA0.5mg/L。
由表11和表12数据对比可以得出6-BA与NAA组合优于KT与NAA组合，因此最适宜叶片愈伤组织分化培养的激素组合为：6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L。
3.8不同激素及浓度对壮苗的影响
将分化出的小芽接种在1～12号培养基中，进行壮苗试验。由表13可以看出，当单独使用NAA时，苗叶片平均长度和宽度最长的为编号4，分别为3.5cm、0.8cm(见图11)；当单独使用IBA时，苗叶片平均长度和宽度最长的为编号8，分别为3.7cm、1.2cm（见图12）。当单独使用IAA时，苗叶片平均长度和宽度最长的为编号12，分别为2.5cm、0.8cm。三组最佳数据做对比可知当培养基中单独附加IBA1.5mg/L时，姬玉露壮苗效果最好，苗大、健壮、无玻璃化现象。
3.9不同激素组合对不定芽生根的影响
NAA不同浓度对姬玉露多肉试管内生根数量的影响，如图13所示。以1/2MS培养基为基本培养基时，NAA浓度为2.0mg/L时，芽根的数量最少，当NAA浓度是1.0mg/L时，芽产生的根数最多，为5条。当WPM培养基为基本培养基时，NAA浓度为0.5mg/L时，芽根的数量最低，当NAA浓度是1.5mg/L时，芽产生的根数最多，为5条（见图15）。综上所述，最适生根培养基为：1/2MS+IBA2.0mg/L。
IBA不同浓度对姬玉露多肉试管内生根数量的影响，如图14所示，以1/2MS培养基为基本培养基时，IBA浓度为0.5mg/L时，芽根的数量最少，当IBA浓度是2.0mg/L时，芽产生的根数最多，为6条(见图16)。当WPM培养基为基本培养基时，IBA浓度为0.5mg/L时，芽根的数量最低，当IBA浓度是2.0mg/L时，芽产生的根数最多，为5条。
3.10不同基质对再生植株生长的影响
把组培苗经过闭瓶强光锻炼后，从瓶中取出种植在表14的四种经过高温高压灭菌后的基质中。经过2个月的锻炼培养，得出结果：当基质为赤玉土：蛭石：泥炭土=2：2：1时，再生植株的移栽成活率最高为83.33%，生长速度快、健壮。原因可能是此基质透气性好、泥炭土中能提供充足的营养物质，其次是基质赤玉土：蛭石：泥炭土=3：1：1，再生植株移栽成活率为66.67%。因此最适炼苗基质为：赤玉土：蛭石：泥炭土=2：2：1。
